🗊Презентация Действие физических и химических фактров окружающей среды на микроорганизмы

ФИЗИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ ФИЗИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ ТЕМПЕРАТУРА ВЫСУШИВАНИЕ ЛУЧИСТАЯ ЭНЕРГИЯ УЛЬТРАЗВУК ДАВЛЕНИЕ

Высокая температура вызывает коагуляцию структурных белков и ферментов микроорганизмов. Большинство вегетативных форм гибнет при температуре 60°С в течение 30 мин, а при 80-100°С – через 1 мин. Высокая температура вызывает коагуляцию структурных белков и ферментов микроорганизмов. Большинство вегетативных форм гибнет при температуре 60°С в течение 30 мин, а при 80-100°С – через 1 мин. Споры бактерий устойчивы к температуре 100°С, гибнут при 130°С и более при длительной экспозиции. Для сохранения жизнеспособности относительно благоприятны низкие температуры. Бактерии выживают при температуре ниже –100°С; споры бактерий и вирусы годами сохраняются в жидком азоте (до –250°С).

Термофильные виды (теплолюбивые) Зона оптимального роста равна 50-60°С, верхняя зона задержки роста - 75°С. Термофилы обитают в горячих сточниках. Термофильные виды (теплолюбивые) Зона оптимального роста равна 50-60°С, верхняя зона задержки роста - 75°С. Термофилы обитают в горячих сточниках. Психрофильные виды (холодолюбивые) растут в диапазоне температур 0-10°С, максимальная зона задержки роста 20-30°С. К ним относит большинство сапрофитов, обитающих в почве, пресной и морской воде. Но есть некоторые виды, вызывающие заболевания у человека. Мезофильные виды лучше растут в пределах 20-40°С; максимальная 43-45°С, минимальная 15-20°С. В окружающей среде могут переживать, но обычно не размножаются. К ним относится большинство патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.

Высушивание приводит к обезвоживанию цитоплазмы, нарушается целостность цитоплазматической мембраны, что ведет к гибели клетки. Высушивание приводит к обезвоживанию цитоплазмы, нарушается целостность цитоплазматической мембраны, что ведет к гибели клетки. При относительной влажности окружающей среды ниже 30% жизнедеятельность большинства бактерий прекращается. Время их отмирания при высушивании различно. Особой устойчивостью обладают споры бактерий.

ЛУЧИСТАЯ ЭНЕРГИЯ. ЛУЧИСТАЯ ЭНЕРГИЯ.

Изучение действия УФ-облучения на микроорганизмы (опыт Бухнера) Чашку Петри с плотной питательной средой засевают тест-культурой (например, E.coli) сплошным газоном. Часть посева накрывают бумагой, и ставят чашку Петри под УФ-лампу на 15 минут, а затем в термостат на 18-24 часа. Прорастают только те микроорганизмы, которые находились под бумагой. Вывод: УФ-облучение губительно действует на бактериальные клетки.

Ультразвук вызывает поражение клетки. Под действием ультразвука внутри клетки возникает очень высокое давление. Это приводит к разрыву клеточной стенки и гибели клетки. Ультразвук используют для стерилизации и хранения стерильных материалов. Ультразвук вызывает поражение клетки. Под действием ультразвука внутри клетки возникает очень высокое давление. Это приводит к разрыву клеточной стенки и гибели клетки. Ультразвук используют для стерилизации и хранения стерильных материалов.

ВЫСОКОЕ ДАВЛЕНИЕ. ВЫСОКОЕ ДАВЛЕНИЕ. Сочетанное действие повышенных температур и повышенного давления используется в паровых стерилизаторах (автоклавах) для стерилизации паром под давлением (автоклавирования).

ХИМИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ. ХИМИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ. В малых концентрациях химическое вещество может являться питанием для бактерий, а в больших — оказывать на них губительное действие. Способность ряда химических веществ подавлять жизнедеятельность микроорганизмов зависит от концентрации химических веществ и времени контакта с микробом (экспозиции).

ТРЕБОВАНИЯ  К  ДЕЗИНФЕКТАНТАМ  ТРЕБОВАНИЯ  К  ДЕЗИНФЕКТАНТАМ  ДЕЗИНФЕКТАНТЫ должны обладать широким спектром действия микробицидным эффектом, хорошо растворяться в воде и образовывать стойкие активные растворы обладать низкой токсичностью и аллергенностью сохранять активность в обеззараживаемой среде не повреждать обеззараживаемые объекты не иметь неприятного запаха быть экологически чистыми При  химических  способах дезинфекции  применяются  кислоты,  щелочи,  окислители, соли  тяжелых  металлов,  фенолы и т.д.

Основные группы дезинфицирующих и антисептических веществ, механизм их антибактериального действия 1. Спирты, или алкоголи (этанол, изопропанол и др.). Как антисептики, наиболее эффективны в виде 60-70%-ных водных растворов. Денатурируют белки и растворяют липиды. Эффективны в отношении вегетативных форм большинства бактерий, однако споры бактерий и грибов, а также некоторые вирусы к ним устойчивы. 2. Галогены и галогенсодержащие препараты: препараты йода (спиртовый раствор йода в этаноле, йодинол) и хлора (хлорная известь NaClO, хлорамин Б, хлоргексидина биглюконат и т.д.). Взаимодействуют с гидроксильными группами белков, нарушая их структуру. Являются окислителями. 3. Альдегиды (наиболее известные - формальдегид 8% и глутаральдегид 2-2,5%) алкилируют сульфгидрильные, карбоксильные и аминогруппы белков и других органических соединений, вызывая гибель микроорганизмов. Применяют для дезинфекции инструментов, рук и помещений.

4. Кислоты и щёлочи применяют как антисептики. Наиболее известны борная, бензойная, уксусная и салициловая кислоты. Применяют для лечения поражений, вызванных патогенными грибами и бактериями. Из щелочей наиболее распространён раствор аммиака (нашатырный спирт содержит 9,5-10,5% аммиака), применяемый для обработки рук в хирургической практике (0,5% раствор нашатырного спирта). 4. Кислоты и щёлочи применяют как антисептики. Наиболее известны борная, бензойная, уксусная и салициловая кислоты. Применяют для лечения поражений, вызванных патогенными грибами и бактериями. Из щелочей наиболее распространён раствор аммиака (нашатырный спирт содержит 9,5-10,5% аммиака), применяемый для обработки рук в хирургической практике (0,5% раствор нашатырного спирта). 5. Соли тяжелых металлов связываются с белками и другими органическими соединениями. В качестве антисептиков применяют нитрат серебра (ляпис), сульфат меди (медный купорос) и хромат ртути (мербромин). 6. Фенолы и их замещенные производные денатурируют белки, повреждают клеточные мембраны и нарушают структуру клеточной стенки бактерий (гексахлорофен, резорцин, хлорофен, тимол, салол).

7. Поверхностно-активные вещества включают анионные (мыла) и катионные детергенты. Мыла обеспечивают механическое удаление микроорганизмов с поверхностей кожи и объектов внешней среды. Из катионных детергентов наиболее широко используются четвертично-аммониевые соединения (ЧАС), обладающие антимикробной активностью - они взаимодействуют с фосфолипидами мембран, нарушая их функции. 7. Поверхностно-активные вещества включают анионные (мыла) и катионные детергенты. Мыла обеспечивают механическое удаление микроорганизмов с поверхностей кожи и объектов внешней среды. Из катионных детергентов наиболее широко используются четвертично-аммониевые соединения (ЧАС), обладающие антимикробной активностью - они взаимодействуют с фосфолипидами мембран, нарушая их функции. 8. Газы. Для уничтожения спор микроорганизмов при стерилизации предметов из пластмасс применяют окиси этилена и пропилена под давлением при 30-60°С. Механизм действия связан со способностью окиси этилена алкилировать белки.

9. Красители (бриллиантовый зелёный, метиленовый синий, риванол, основной фуксин). Взаимодействуют с нуклеиновыми кислотами, нарушая их функции. 9. Красители (бриллиантовый зелёный, метиленовый синий, риванол, основной фуксин). Взаимодействуют с нуклеиновыми кислотами, нарушая их функции. 10. Окислители (наиболее распространённые - перекись водорода, перманганат калия), окисляют метаболиты и ферменты микроорганизмов, либо денатурируют микробные белки. 11. Гуанидины (полиалкиленгуанидины) связываются с белками ЦПМ, что приводит к ее разрыву, блокируют гликолитические ферменты дыхательной системы микробной клетки. 12. Металлы. Серебро. Механизм действия серебра на микроорганизмы хотя и изучается, но пока до конца не раскрыт. Чистое серебро инертно и не реагирует на ткани человека или микроорганизмы до ионизации. Биоактивен именно его ион, легко связывающийся с отрицательно заряженными белками, РНК, ДНК, ионами хлора и т. д. Чувствительные к серебру бактерии имеют способность поглощать и концентрировать в себе его ионы. Антимикробное действие практически мгновенно, как только серебро достигает микроорганизма. Принято считать, что концентрация 105–107 ионов серебра на бактериальную клетку летальна. В 1968 г. Чарльз Фокс представил сульфадиазин серебра, и он оказался наиболее успешным антимикробным препаратом с широким спектром активности: для гибели бактерий и грибов на коже достаточно 1% мази. Мазь сульфадиазина серебра стала стандартом антибактериального лечения обширных ожогов, широко применяют ее и сегодня. В последние годы предложены различные серебросодержащие повязки для лечения ран (silverlon, silvasorb, contreet-H, arglaеs, aquacel-Ag и другие). Они более практичны, чем серебро в растворе, соли, цельном веществе. «Основой» для таких перевязочных материалов служат полимерная ткань, гидроколлоидные, угольные повязки, пленки, гидроволокна и др.

МИКРОБНАЯ ДЕКОНТАМИНАЦИЯ МИКРОБНАЯ ДЕКОНТАМИНАЦИЯ полное или частичное удаление микроорганизмов с объектов внешней среды и биотопов человека с помощью факторов прямого повреждающего действия. Может быть выделено два принципиально различных типа деконтаминации:   Дезинфекция Антисептика Стерилизация Химиотерапия

Антисептика- совокупность способов уничтожения и подавления роста и размножения потенциально опасных для здоровья человека микроорганизмов в ранах, на коже, слизистых и полостях. Антисептика- совокупность способов уничтожения и подавления роста и размножения потенциально опасных для здоровья человека микроорганизмов в ранах, на коже, слизистых и полостях. Асептика-совокупность прямых и косвенных методов воздействия на микроорганизмы с целью создания безмикробной зоны или зоны с резко сниженной численностью микроорганизмов.        

ДЕЗИНФЕ́КЦИЯ ДЕЗИНФЕ́КЦИЯ комплекс мероприятий, направленных на уничтожение возбудителей инфекционных заболеваний и разрушение токсинов на объектах внешней среды. Профилактическая — проводится постоянно, независимо от эпидемической обстановки. 2. Очаговая: текущая — проводится при наличии инфекции с целью предупреждения распространения инфекционных заболеваний за пределы очага. заключительная — проводится после изоляции, госпитализации, выздоровления или смерти больного с целью освобождения эпидемического очага от возбудителей. СТЕРИЛИЗАЦИЯ Полное освобождение объектов окружающей среды от микроорганизмов и их спор.

Цикл обработки изделий медицинского назначения Этапы : 1. Дезинфекция: сразу после использования изделия погружают в раствор дезсредства на необходимое время (экспозиция), затем тщательно отмывают. 2. Предстерилизационная очистка: удаление с изделий белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов (чрезвычайно важное условие современной эффективной обработки изделий медицинского назначения). 3. Стерилизация.

МЕТОДЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ: МЕТОДЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ: Механический - основан на механических приемах удаления возбудителей инфекционных заболеваний Физический - воздействие различных видов высокой температуры а также ультрафиолетового облучения, облучение токами высокой частоты и ультразвуком. Химический (основной способ) - уничтожении болезнетворных микроорганизмов и разрушении токсинов дезинфицирующими веществами. Комбинированный.

СПОСОБЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ: СПОСОБЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ: КИПЯЧЕНИЕ ОРОШЕНИЕ ПРОТИРАНИЕ ПОГРУЖЕНИЕ (ЗАМАЧИВАНИЕ) ЗАСЫПАНИЕ

Методы контроля качества дезинфекции Визуальный контроль. Выясняют санитарное состояние объекта, своевременность проведения дезинфекционных мероприятий, обоснованность выбора объектов и методов обеззараживания, полноту обеззараживания поверхностей помещений, отдельных вещей, предметов и объектов, количество вещей, взятых для камерной дезинфекции, и т.д. Химический контроль. Определение содержания действующих веществ, соответствия концентрации рабочих растворов концентрациям, предусмотренным инструкциями. Качественный метод: йодкрахмальный метод контроля за применением хлор-содержащих препаратов (остаточный хлор на обработанных поверхностях). Основан на цветной реакции йода с крахмалом. При взаимодействии с раствором йодида калия хлор вытесняет из раствора йод и занимает его место. Выделившийся йод окрашивает крахмал в сине-бурый цвет.

Бактериологический контроль: обнаружение санитарно-показательной кишечной палочки методом смыва. Бактериологический контроль: обнаружение санитарно-показательной кишечной палочки методом смыва. Смывы с каждого объекта производят одним тампоном. После взятия пробы тампон погружают в пробирку с мясо-пептонным бульоном. В случае контроля качества обработки изделий хлорсодержащими растворами в питательный бульон добавляют 1 мл 1 % раствора стерильного тиосульфата натрия (нейтрализатор остаточного хлора). Засеянные пробирки в тот же день доставляют в лабораторию и помещают в термостат при температуре 37°С на 24 ч. (накопление). По истечении указанного срока из пробирок производят высев на чашки со средой Эндо и помещают в термостат при температуре 37°С на 24 ч, после чего ведут исследования на кишечную палочку по общепринятой методике.

ОСНОВНЫЕ МЕТОДЫ дезинфекции. Контроль качества дезинфекции Воздух в перевязочных, операционных Метод дезинфекции: физический (УФ-облучение) Метод контроля: бактериологический (определение ОМЧ воздуха седиментационным или аспирационным методами). Поверхности Методы дезинфекции : физический (УФ-облучение), химический (дезинфектанты, основной), механический (дополнительный). Метод контроля: визуальный, химический, бактериологический Инструменты, белье, перевязочный материал Методы дезинфекции: физический (автоклавирование, воздействие различных видов высокой температуры, УФ-облучения, облучение токами высокой частоты и ультразвуком), химический (дезинфектанты), механический (дополнительный). Метод контроля: бактериологический.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ Полное освобождение объектов окружающей среды от микроорганизмов и их спор. Методы стерилизации: физические, химические.

Автоклавирование — это обработка паром под давлением, которая проводится в специальных приборах — автоклавах Паром под давлением стерилизуют питательные среды, патологический биоматериал, инструментарий, белье и т.д. Наиболее часто используемый режим стерилизации в автоклаве 121°С (1 атм.) 40 минут. Иногда применяют дробную стерилизацию (тиндализацию) текучим паром в автоклаве при 56°С для обработки материалов, не выдерживающих дальнейшее нагревание (чаще всего питательные среды). Материал нагревают в течение 30-60 минут, а затем помещают на сутки в термостат при 37°С. Процедуру повторяют трижды. Нагревание стимулирует прорастание спор. Образовавшиеся вегетативные формы погибают при последующем повышении температуры.

ПАРОВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПАРОВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ Преимущества: Наиболее распространенный метод стерилизации в ЛПУ. Безопасен для окружающей среды и медицинского персонала. Короткая экспозиция. Не обладает токсичностью. Низкая стоимость. Недостатки: Качество стерилизации может быть нарушено при попадании воздуха, повышенной влажности материалов и плохом качестве пара. Могут повреждаться изделия, чувствительные к действию высокой температуры и влажности (коррозия металлических инструментов).

ПАРОВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПАРОВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ ОСТ – 42-21-2-85. Отраслевой стандарт. Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы. Режимы стерилизации: 2,0 атм – 132*С – 20 мин 1, 1 атм – 120*С – 45 мин Сроки хранения стерильного материала после паровой стерилизации (не вскрывая упаковки) бикс простой – 3 суток бикс с бактериальным фильтром – 20 суток крафт - пакет, заклеенный с двух сторон – 20 суток крафт - пакет с двумя скрепками - 3 суток бязевая упаковка - 3 суток

СУХОВОЗДУШНАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ СУХОВОЗДУШНАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ Проводится в сухожаровом шкафу. Сухим жаром стерилизуют, в основном, лабораторную посуду.

СУХОВОЗДУШНАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ СУХОВОЗДУШНАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ ОСТ – 42-21-2-85. Отраслевой стандарт. Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы. Особенности суховоздушной стерилизации: горячий воздух плохо перемещается по камере и могут образоваться «холодные» точки, поэтому, при загрузке шкафа материал должен занимать только 2/3 объема шкафа. Режимы стерилизации: 1800С – 1 час 1600С – 2, 5 часа Сроки хранения стерильного материала после суховоздушной стерилизации: материал, простерилизованный без упаковки, используется непосредственно сразу крафт - пакет, заклеенный с двух сторон – 20 суток крафт - пакет с двумя скрепками - 3 суток

В бактериологических лабораториях используется следующие методы стерилизации: В бактериологических лабораториях используется следующие методы стерилизации: Прокаливание. Этот способ применяют для обеззараживания бактериологических петель и шпателей. Для прокаливания над огнем используют спиртовки или газовые горелки. Гласперленовый метод. Прокаливание небольших цельнометаллических инструментов в среде стеклянных шариков. Чаще всего в бактериологических лабораториях используются паровая и суховоздушная стерилизация.

Лучевая (радиационная) стерилизация осуществляется в специальных установках с помощью гамма-излучения. Инактивация микроорганизмов под действием гамма-лучей происходит в результате повреждения нуклеиновых кислот. Лучевая стерилизация позволяет обрабатывать сразу большое количество предметов (одноразовых шприцев, систем для переливания крови и т.д.). Лучевая (радиационная) стерилизация осуществляется в специальных установках с помощью гамма-излучения. Инактивация микроорганизмов под действием гамма-лучей происходит в результате повреждения нуклеиновых кислот. Лучевая стерилизация позволяет обрабатывать сразу большое количество предметов (одноразовых шприцев, систем для переливания крови и т.д.). Низкотемпературная пероксидно-плазменная стерилизация: альтернатива низкотемпературной газовой стерилизации окисью этилена и стерилизации в парах формальдегида (высокая токсичность стерилизующих агентов). Стерилизация проводится в сухой атмосфере при температуре 36°С. В качестве стерилизующего агента используются пары 50-58% водного раствора пероксида водорода и его низкотемпературная плазма. Используют пероксидно-плазменные стерилизаторы, размещаемые в ЦСО или в операционных блоках. Этим методом можно стерилизовать практически все инструменты и изделия медицинского назначения, включая микрохирургические инструменты, волоконные световоды, лазерные и световодные излучатели, электрические шнуры и кабели, электрические и электронные устройства, электрофизиологические катетеры, рукоятки инструментов, дыхательные контуры, пластиковые емкости и другие медицинские изделия, стерилизация которых при высокой температуре и влажности невозможна. Особенно эффективно применение данного метода для стерилизации изделий из термолабильных материалов и материалов, склонных к активной коррозии. Плазменная стерилизация инструментов с тонкими и острыми рабочими частями позволяет уменьшить их износ и сохранить работоспособность на более длительный срок по сравнению с инструментами, стерилизуемыми в автоклавах. Использование этого метода дает возможность стерилизовать внутренние поверхности каналов медицинских изделий, например эндоскопов, диаметром до 1 мм и длиной до 3000 мм.

КОНТРОЛЬ режима СТЕРИЛИЗАЦИИ КОНТРОЛЬ режима СТЕРИЛИЗАЦИИ химический — при каждой загрузке помещают химические тесты - индикаторы стерилизации При достижении заданного режима стерилизации тесты меняют свой цвет термический — 2 раза в месяц максимальным термометром во время стерилизации проводят замер температуры в контрольных точках, которая должна достичь заданных параметров биологический — проводится 2 раза в год. В контрольных точках помещают биотесты с термоустойчивой споровой культурой.

Контроль стерильности Контроль стерильности питательных сред: готовую среду помещают на 2 суток в термостат при 370С. На среде не должно быть признаков роста микроорганизмов. Бактериологический контроль стерильности: смывы. С помощью стерильного пинцета участок поверхности тщательно протирают марлевой салфеткой (размер салфетки 5 х 5 см), увлажненной стерильной водой или стерильным 0,9% раствором NaCl, или раствором нейтрализатора (при стерилизации раствором химического средства). Каждую салфетку помещают в отдельную пробирку с питательной средой (тиогликолевая среда и среда Сабуро). Тиогликолевая среда содержит питательный бульон, 0,1% агара, 0,5% глюкозы, 0,1% натрия тиогликолата (обладает выраженными восстановительными св-вами) и индикатор - резазурин. Любое повышение концентрации кислорода сопровождается изменением цвета индикатора редокс-потенциала (резазурина) на красный. Среда Сабуро (бульон для культивирования грибов) состоит из 1% пептона, 4% мальтозы, рН 6,5 - 7.