🗊Презентация Применение методов флуоресцентных зондов для исследования белковых комплексов

Применение методов флуоресцентных зондов для исследования белковых комплексов

Флуоресцентные красители различной химической природы

Структуры типичных флуоресцирующих соединений

Параметры флуоресценции 1) Спектры поглощения и ФЛ – длины волн света, которые преимущественно поглощает и излучает вещество Параметры спектра: - Интенсивность ФЛ -Положение максимумов - Полуширина спектра 2) Квантовый выход ФЛ – эффективность трансформации поглощенной энергии в энергию излучения

Параметры флуоресценции 3) Время жизни ФЛ – усредненное время в течении которого молекулы флуорофоров находятся в возбужденном состоянии перед испусканием фотонов 4) Анизотропия ФЛ – количественная характеристика зависимости поляризации ФЛ поляризации возбуждающего света

Дополнительные информационные возможности ФЛ Р 5) Безызлучательная передача энергия 6) Тушение ФЛ Молекулы – тушители: кислород, галогены, электрондефицитные органические молекулы

Спектры Спектры Квантовый выход Время жизни Анизотропия БПЭ Тушение

ФИЗИКО ХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ АНАЛИЗА СТРУКТУРЫ БЕЛОК СОДЕРЖАЩИХ КОМПЛЕКСОВ В РАСТВОРЕ

ФЛУОРЕСЦЕНТНЫЕ МЕТОДЫ

МЕТОД ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ СПЕКТРОСКОПИИ

МЕТОД ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ СПЕКТРОСКОПИИ

Методы тушения флуоресценции

Флуоресцентная анизотропия

Спасибо за внимание!

МЕТОД ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ СПЕКТРОСКОПИИ МЕТОД ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ СПЕКТРОСКОПИИ Метод флуоресцентной спектроскопии является одним из наиболее распространенных для изучения физикохимических свойств биологических систем и, в частности, структуры белков. Этот метод позволяет следить за изменениями в микроокружении собственных флуорофоров белка или введенной флуоресцентной метки. Белки содержат три аминокислотных остатка, которые вносят основной вклад в собственную флуоресценцию белка (тирозин, фенилаланин и триптофан). Собственная флуоресценция большинства белков обусловлена, в первую очередь, триптофановыми остатками. Для селективного возбуждения остатков триптофана используется диапазон длин волн 295–305 нм, в котором поглощение тирозина и фенилаланина минимально. Флуоресцентные свойства триптофана крайне чувствительны к изменению его микроокружения, и главным образом, полярности. В соответствии с этим, комплексообразование с низкомолекулярными лигандами и макромолекулами, денатурация, агрегация и другие процессы существенным образом влияют на спектры флуоресценции белков. Например, при термоденатурации ХТ триптофановые остатки переходят из гидрофобных областей белка в полярное водное микроокружение. В результате этого мах собственной флуоресценции белка сдвигается в сторону больших длин волн (от 333 до 340 нм), а интенсивность флуоресценции увеличивается в два раза. Следует учесть, что триптофан в свободном состоянии) характеризуется в водном растворе мах 354 нм. Высокая чувствительность метода (10–6–10–7 М по белку) позволяет исследовать разбавленные растворы, что важно при изучении структуры склонных к агрегации белков, а также в случае, когда необходимо следить за структурой фермента в условиях определения его каталитической активности (обычно это концентрации белка 10–6–10–7 М). Однако детальный анализ собственной флуоресценции белков затрудняется как обилием факторов, влияющих на флуоресценцию триптофана, так и наличием в белках нескольких остатков триптофана, различающихся микроокружением и степенью экспонированности. Спектры испускания остатков перекрываются во всем используемом диапазоне длин волн, в связи с чем крайне сложно разделить спектральные вклады каждого из них Разделение вкладов триптофановых остатков в спектр флуоресценции белков Установить спектральные вклады различных триптофановых остатков можно путем изучения кинетики затухания флуоресценции методoм разрешенновременной флуоресцентной спектроскопии, позволяющим определить флуоресцентные времена жизни для каждого из триптофановых остатков , а также с помощью дифференциального метода анализа флуоресцентных спектров. Преимущество последнего метода состоит в существенно большем разрешении пиков по сравнению с интегральным спектром. Данный метод анализа спектров наиболее широко применяется в абсорбционной и ИК спектроскопии. На основе анализа пространственной структуры белка (из данных РСА) и данных по кинетике затухания флуоресценции (или динамического тушения флуоресценции) в спектре испускания осуществляют соотнесение флуоресцентных мах к индивидуальным триптофановым остаткам . Разделение спектра флуоресценции и идентификация индивидуальных триптофановых остатков основаны на предположении о влиянии микро& окружения флуорофора на зависимость времени затухания от длины волны. Идентификация индивидуальных триптофановых остатков в спектрах флуоресценции позволяет получить детальную информацию об изменении структуры белка.

Методы тушения флуоресценции Методы тушения флуоресценции Обычно рассматривают два вида тушения флуоресценции: статическое — связанное с образованием нефлуоресцирующего комплекса, и динамическое — связанное со случайными столкновениями между флуорофором и тушителем. Данные по тушению обычно представляют в координатах F0 /F(интенсивности флуоресценции, соответственно, в отсутствии и в присутствии тушителя) от [Q]( концентрация тушителя), так как ожидается, что F0/F должно линейно зависеть от концентрации тушителя. Линейная зависимость в координатах Штерна-Фольмера указывает на существование одного типа флуорофоров, одинаково доступных для тушителя. При тушении триптофановых остатков в белках полярными или заряженными тушителями, которые с трудом могут проникнуть внутрь белковой глобулы, экспериментальная кривая отклоняется от линейного вида. На этом основано использование метода динамического тушения для определения поверхностной доступности триптофановых остатков. Примером может являться исследование тушения флуоресценции триптофановых остатков люцифераз, Cs+ионами и акриламидом . Тушение доступных остатков триптофана во многих случаях позволяет различить спектры испускания внутренних и внешних остатков.

Флуоресцентная анизотропия Флуоресцентная анизотропия Существует несколько причин деполяризации (уменьшения анизотропии), среди которых основной является вращательная диф& фузия флуорофоров. Таким образом, величину флуоресцентной анизотропии определяет скорость вращательной диффузии флуоро&фора во время жизни его возбужденного состояния. Взаимосвязь между экспериментально определяемой флуоресцентной анизотропией, флуоресцентным временем жизни и скоростью вращательной диффу& зии флуорофора устанавливается уравнением Перрeна Данная взаимосвязь лежит в основе использования методов изме& рения флуоресцентной анизотропии в биохимических исследованиях. Измерение анизотропии флуоресценции используется для количест& венной оценки денатурации и реакций ассоциации белков с лиган& дами [131], для изучения комплексообразования с макромолекулами: связывание антигена с антителом, ассоциация белков [109]. При комп& лексообразовании существенно меняются размер, пространственная структура и подвижность сегментов макромолекулы, которые сопро& вождаются изменением флуоресцентной анизотропии. Приведем несколько примеров исследования белок&содержащих комплексов методом стационарной анизотропии.