🗊Презентация Проблема биосовместимости (лекция 3)

Проблема биосовместимости

Современные устройства и микро электроды

Технология Brain gate

Схема микроэлектродной измерительной ячейки Микроэлектрод Физиологический раствор Индифферентный электрод Нервная клетка

Воздействие электродов на ткань

Общий вид MEA-чипов

Гистологические аспекты При использовании искусственных конструкций возникают трудности, преодолеть которые еще не удалось. Самой существенной из них является отторжение интерфейса организмом после сравнительно короткого периода работы. Вживленные электроды постепенно обрастали рубцами, искажающими электрические импульсы. И в итоге связь чипа с нейронами прерывалась. Создание технического устройства на современном уровне технологий – преодолимая проблема. Нет возможности надёжно подключить этот интерфейс к мозгу. Если ставить больным подобные импланты сейчас, то через небольшие промежутки времени придется делать повторные операции. При этой переустановке чипов тканям может быть причинен дополнительный вред. Обучиться пользоваться имплантом требует нескольких месяцев. После повторной операции обучение придётся начинать сначала. Необходимо искать более совместимые с биологическими тканями материалы. И пока не будет возможности безопасной работы искусственных нейрочипов в течении хотя бы 2-х лет, речи о их реальном массовом использовании вестись не должно

Проблемы, которые предстоит решать Поверхность субстрата легко эродирует когда погружается в раствор на долгое время; Фиксация клеток. Зазор между клетками и электродами затрудняет контроль при смещениях клеток в случае плохого прилипания к MEA-чипу; Клеточные культуры нейронов плохо приживаются по сравнению с другими тканями и недолговечны; Приживаемость и выживаемость клеточных культур может служить критерием биосовместимости материала подложки для оценки перспективности использования этого материала в качестве микроэлектрода.

Трудности культивирования нейронов Нейрон – очень капризная клетка. Клеточные культуры нейронов плохо приживаются по сравнению с другими тканями и недолговечны; Существует практика органных культур или целых фрагментов тканей, в которых частично поддерживается гистологическая целостность. Органных культур нервной ткани вообще получить не удаётся (только переживающие срезы). При помощи MEA-чипов от срезов удаётся зарегистрировать только суммарную, но не импульсную активность. Приживаемость преживающего среза к субстрату была бы наилучшим основанием для имплантации такого чипа непосредственно в мозг. «Взрослые» ткани характеризуются пониженным пролиферативным пулом и более высоким содержанием неделящихся специализированных клеток, часто ассоциированных с внеклеточным матриксом. Получение культур клеток «взрослых» тканей и их размножение являются более сложной задачей, и продолжительность жизни таких культур, как правило, невелика. Культуры из эмбриональных тканей имеют лучшую выживаемостью и более активный рост по сравнению с «взрослыми» тканями. Это отражает более низкий уровень специализации и наличие реплицирующихся клеток-предшественников или стволовых клеток в эмбрионах.

Регенерация нервной ткани при помощи стволовых клеток Исследования на мышах и крысах показали, что впрыснутые эмбриональные стволовые клетки (ЭСК) дифференцируются и восстанавливают нарушенные связи между нервами. Подопытные крысы с повреждённым спинным мозгом, получившие клеточную инъекцию, владели задними лапами значительно лучше, чем контрольные крысы, которых не лечили. То же самое относится и к мезенхимным стволовым клеткам (МСК). Вдобавок к этому они поставляют нервам ценные вещества, которые необходимы для нормального функционирования и роста.

Возможности стволовых клеток для биосовместимости a) Изображение выделенного нейрона,, полученное с помощью атомного силового микроскопа; в) увеличенное изображение показывает, что морфология тонкой пленки пентацена не нарушена и не изменена при взаимодействии с клеткой; c) то же самое изображение, что b) при иной фокусировке микроскопа для демонстрации морфологии аксона (вставка показывает неизмененную пленку пентацена из b)

Наносенсоры имеют потенциал для мониторинга ин-виво процессов обмена отдельной клетки со средой, причём с учётом специфической локализации на клетке. Наносенсоры имеют потенциал для мониторинга ин-виво процессов обмена отдельной клетки со средой, причём с учётом специфической локализации на клетке. Наноструктурные материалы, которые подражают наномерной топографии настоящих тканей, могут улучшить биосовместимые реакции и привести к лучшей тканевой интеграции в медицинских имплантах. Понимание различных аспектов нанотопографии особенно важно для лучшего проектирования этих устройств. Микро/наночастицы собираются в узоры и формируют субстрат для присоединения белков и клеток. Смонтированные частицы (модули) создают на поверхности нано-топографию, зависящую от размера задействованных частиц. Неплоская структура может увеличить площадь поверхности для присоединения биомолекул и этим усилить чувствительность биосенсора. Наноструктурированный субстрат может воздействовать на конформацию и функционирование присоединённых к нему белков Реакция клеток с точки зрения морфологии, адгезии, пролиферации, дифференциации и т.п. может усиливаться выступающими из поверхности микро- и нано-структурами. Способность установливать клетки на субстрат с точно контролируемым размером и пространственной организацией позволит провести фундаментальное исследование клеточных реакций.

Культура клеток на подложке из нанотрубок Коллектив из Италии 8–12 дней культивировал нервные клетки гиппокампа крыс на подложках из одностенных нанотрубок. Для получения подложек раствор нанотрубок осаждали на стекло, где после термообработки образовывалась пленка толщиной 50–70 нм. По всей подложке разрослись нейроны, имеющие размеры и морфологию, типичные для здоровых клеток. При этом они тесно соединились с нанотрубками (D). Анализ выявил плотный контакт мембраны нейрона с нанотрубкой (E-F), что очень важно для создания интерфейса «нейронная ткань-внешнее устройство». Рост нейронов и образование функциональной сети указывает на хорошую биосовместимость.

Формирование искуственной нейросети при помощи нанотрубок В основе чипа — пластинка из кварца. На ней расположили каркас из участков, покрытых нанотрубками, с шагом между узлами 100 мкм. Аксоны и дендриты хорошо связывались с нанотрубками и использовали их как своего рода «строительные леса». В результате образовывались кластеры клеток по 20-100 штук в каждом. Отдельные кластеры начали формировать отростки в направлении других кластеров, образуя правильную сеть. Кластеры проявляли электрическую активность, свойственную нервным клеткам. Нанотрубки упрощают электрический контакт между отдельными клетками и могут функционировать в качестве электродов.

Имплантируемые микроэлектроды, модифицированные проводящими полимерными нанотрубками

Нейрональная культура на силиконовом чипе (a) Крылья стимулятора (St) и транзистор (S, источник, D, сток, G, ворота), обозначаемый как силиконовый чип. Черта - 20 мкм. (b) Отдельный нейрон был захвачен внутрь столбиков, отростки распространились наружу и соединились с другими. Черта - 20 мкм. (c) Несколько полимидных столбиков на биосенсоре. Черта - 100 мкм.

Идея «Нанопесок»

Золотые электроды-шипы (a,b) Схематическое представление нейрона, обволакивающего золотой шип-электрод (a) и нейрон на плоском электроде (b). (c) Электронная микрофотография среза через нервную клетку PC12, обволакивающую три золотых шипа-электрода. (d) Электронная микрофотография золотого шипа, покрытого клеткой PC12. (e) Три нейрона Aplysia на массиве из многих золотых шипов. Шкалы масштаба -5 мкм (с), 500 нм (d) и 50 мкм (e). (f) Одновременная запись импульсов (синий) от 8-и шипов-электродов (см числа на e) на внутриклеточную стимуляцию обычным игольчатым микроэлектродом (красный).

Нано-микроузорные клеточные культуры

Биосенсоры, основанные на нанопорах Очень высокое соотношение площади поверхности к объёму – самое важное свойство нанопористых материалов.; Контроль размера пор, морфологии и распределения компонентов ведёт к существенному прогрессу при применении этих материалов как катализаторов, электродов, хроматографических, сепарирующих и посылающих элементов; В биоинженеринге использовался нанопористый анодированный оксид алюминия (AAO или алюмин) по причине его отличной биосовместимости и хорошо отлаженной технологии изготовления; Алюмин применялся как субстрат для культивирования тканей. В том числе культура остеобластов культивировалась на нём в течении 3-х лет. Одним из самых критических факторов является реакция клетки на топографию поверхности. Поверхность алюмина демонстрирует существенную биоинтеграцию и врастание клеток внутрь. Реакция клеток может быть ещё улучшена через нано-масштабную архитектуру; Биосенсорная система была настроена для процедуры измерения импеданса клеточной культуры.

Нанопористые материалы ФГУП ЦНИИ Материалов

Стеклянный композит В стеклянной пластинке создаются сквозные поры, заполненные нанопористым материалом; Поры занимают определённую площадь на пластинке и располагаются с регулярным чередованием; Диаметр пор и расстояние между ними могут быть заданы при изготовлении; На основании этого материала возможно создание MEA-чипа с раздельной электрической адресацией контактных площадок.

Шипики дендритов

Культуры фибробластов на разных НАК (Б.А. Моргулис)

Конструкции биосовместимых зондов с использованием НАК

Спасибо за внимание